O café é uma das bebidas mais consumidas no mundo e possui uma grande importância econômica para os países produtores e consumidores, o que faz com que esse produto seja alvo de constantes adulterações. Apesar dos adulterantes não apresentarem necessariamente um risco à saúde, a sua prática viola o direito do consumidor e pode comprometer a qualidade do produto final. Os principais adulterantes que são torrados e moídos juntamente com o café, como cereais e outros materiais, dificultam a percepção da prática da adulteração. Recentemente, foram relatados casos de adulteração com caroço de açaí. Nesse sentido, os órgãos de fiscalização devem garantir autenticidade e qualidade da bebida. Devido à sua sensibilidade e especificidade, os métodos baseados na técnica de PCR (Reação em cadeia da DNA polimerase), são alternativas promissoras quando comparado aos métodos convencionais. Entretanto, o genoma do açaí não está inteiramente sequenciado, dificultando a aplicação de método baseado em PCR. Assim sendo, o objetivo deste trabalho foi detectar fragmentos de DNA específicos de açaí para a definição de marcador molecular e posterior aplicação em análises de adulterações de café torrado e moído. Para tanto foi aplicada a técnica de RAPD (Random Amplification of Polymorphic DNA), usando 20 oligonucleotídeos iniciadores decaméricos da série OperonW (OPW) e o DNA isolado de amostras de açaí, café robusta e café arábica. O fragmento de 1.467pb, gerado pela reação com OPW18 e o DNA de açaí, apresenta maior potencial para a definição de marcador molecular desta espécie, permitindo o desenho de oligonucleotídeos iniciadores para o desenvolvimento de método baseado em PCR. A disponibilização de um método baseado em PCR será um avanço no que se refere às análises de detecção e quantificação de adulterantes em café torrado e moído, contribuindo para a fiscalização do produto e evitando prejuízos de ordem econômica ao consumidor.